بررسی تاثیر نانوذرات نقره در جدایه های اشریشیاکلی مربوط به عفونت های ادراری مقاوم به چندین آنتی بیوتیک

نوع مقاله : پژوهشی اصیل

نویسندگان

1 موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شعبه مشهد، ایران

2 دانش آموخته کارشناسی ارشد رشته باکتری شناسی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید باهنر کرمان، ایران.

3 دانش آموخته ی کارشناسی ارشد میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه دانشگاه آزاد اسلامی سبزوار، ایران.

چکیده
مقدمه

عفونت مجاری ادراری یکی از معمول ترین و رایج ترین عفونت های باکتریایی می باشد به طوری که نسبت قابل توجهی از مراجعه کنندگان به بیمارستان ها (حدود 30-40 درصد) را به خود اختصاص می دهد. نانوذرات نقره با آزاد سازی یون های نقره علیه باکتری های گوناگون اثر دارند . این مسئله که باکتری ها نسبت به نانوذرات مقاومت پیدا نمی کنند بسیار مهم و ضروری می باشد و به همین علت بر طیف وسیعی از باکتری ها اثرگذار خواهند بود.

مواد و روش کار:

در این مطالعه 50 نمونه از کشت های مثبت دارای عفونت ادراری ارجاع شده به آزمایشگاه بیمارستان امام رضا شهرستان بجنورد، مورد بررسی قرار گرفت. بررسی مقاومت و حساسیت جدایه ها با روش دیسک دیفیوژن انجام گردید. در این مطالعه اثرات ضد باکتریایی نانوذرات نقره با استفاده از عصاره ی آبی قارچ گانودرما لوسیدوم به روش میکرودایلوشن انجام گردید. جهت اندازه گیری ابعاد و شکل نانو ذرات نقره از میکروسکوپ الکترونی رویشی استفاده گردید. همچنین جهت بررسی ترکیبات آلی احتمالی که در سنتز نانو ذرات امکان دخالت را داشتند آنالیز طیف سنجی مادون قرمز انجام شد.

یافته ها: بیشترین مقاومت آنتی بیوتیکی مربوط به آنتی بیوتیک آمپی سیلین (84 درصد) بود. نانو ذرات حاصله دارای ابعاد 20 تا 45 نانومتر بود.

نتیجه گیری:

نانو ذرات تولید شده دارای خاصیت ضد میکروبی بوده و می توانند در مقادیر معین جایگزین خوبی در درمان بیماری های عفونی مقاوم به آنتی بیوتیک ها باشند

کلیدواژه‌ها

موضوعات


[1]. Dan, L.I. Minchen, D.G. Xi, G.U. (2010). A multiplex PCR method to detection Escherichia coli serogroups associated with urinary tracr infections. J Microbiol Meth. 82:71-72.
[2]. Ghanbarpour, R. (2012). Detection of β-lactamase and urovirulence genes in Escherichia coli serogroups isolated from urinary tract infection in cats. Environ Microbiol. 10:1450-5.
[3]. Adib, N., Ghanbarpour, R., Solatzadeh, H., & Alizade, H. (2014). Antibiotic resistance profile and virulence genes of uropathogenic Escherichia coli isolates in relation to phylogeny. Trop Biomed. 31(1): 17-25.
[4]. Nogrady N., Gado I., Fekete P. Z., Paszti J. (2005) .Chloramphenicol resistance genes in Salmonella enterica subsp. Entericaserovar Typhimurium isolated from human and animal sources in Hungary. Vet. Med. – Czech. 50(4): 164–170.
[5]. World Health Organization. (2001). WHO Global Straegy for Containment of Antimicrobial Resistance. Geneva, Switzerland: WHO. 1-105.
[6]. Ghanbarpour R, Daneshdoost S. (2010). Identification of shiga toxin and intimin coding genes in Escherichia coli isolates from pigeons (Columba livia) in relation to phylotypes and antibiotic resistance patterns. Trop Anim Health Prod. 4(2):307-312.
[7]. N. Duran, P.D. Marcato, O.L. Alves, G.I. De Souza, E. Esposito. (2005) .Journal of nanobiotechnology. 8(5):180-191.
[8]. M. Rai, S. Deshmukh, A. Ingle, A. Gade. (2005) .Journal of applied microbiology. 12(1):841-850
[9]. M. Rai, A. Yadav, A. Gade. (2005). Biotechnology advances. 2(7): 76-82.
[10]. Lindequist U, Niedermeyer TMJ and Jülich WD. (2005). The Pharmacological Potential of Mushrooms. Evidence-based compl. And Alt. Medicine. 2(2):85 - 99.
[11]. Mayzumi F, Okamoto H & Mizuno T. (1977) .Cultivation of Reishi (Ganoderma lucidum). Food Rev. Int. 13: 365 - 82.
[12]. Clinical and Laboratory Standards Institute (2016) Performance standards for antimicrobial susceptibility testing: twenty-second informational supplement. CLSI document M100–S22. Wayne, PA, USA.
[13]. Mosmann,T.(1983). Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assay. Immunol. Methods. 6(5):55-63.
[14]. Medically Important Antimicrobial Drugs in Food-Producing Animals. (2012). US Food and Drug Administration
[15]. Hameed, A.S.H., Karthikeyan, C., Ahamed, A.P., Thajuddin, N., Alharbi, N.S., Alharbi, S.A. and Ravi, G. (2016).In vitro antibacterial activity of ZnO and Nd doped ZnO nanoparticles against ESBL producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. Scientific reports. 6(3):241-251.
[16]. Nedaei S, Yaghoubi H, Akbari H. (2017). Green synthesis and cytotoxicity effect of silver nanoparticles by using the extract of Tuber spp. Pathobiology Research. 3(20):61-76.
[17]. Mohasseli T, Poursidi Sh. (2015). Green synthesis and characterization of silver nanoparticles using aqueous extract of Sesamum indicum seeds. Biotechnology Tarbiat Modares University. 6(1): 10-20.